在真核基因表達(dá)調(diào)控研究中,轉(zhuǎn)錄因子與特定DNA序列的結(jié)合是啟動(dòng)或抑制基因轉(zhuǎn)錄的關(guān)鍵步驟。染色質(zhì)免疫沉淀(Chromatin Immunoprecipitation,ChIP)是一種用于在細(xì)胞或組織生理狀態(tài)下解析蛋白質(zhì)與DNA相互作用的技術(shù),它通過化學(xué)交聯(lián)將蛋白質(zhì)與DNA在活細(xì)胞中牢固結(jié)合,經(jīng)超聲或酶切將染色質(zhì)片段化,利用特異性抗體富集目標(biāo)蛋白及其所結(jié)合的DNA片段,最終通過PCR或測(cè)序鑒定目標(biāo)蛋白在全基因組范圍內(nèi)的結(jié)合位點(diǎn)。該技術(shù)是研究轉(zhuǎn)錄調(diào)控、組蛋白修飾和表觀遺傳機(jī)制的手段之一。
免疫沉淀CHIP的技術(shù)流程涵蓋了交聯(lián)、細(xì)胞裂解、染色質(zhì)片段化、免疫沉淀、交聯(lián)逆轉(zhuǎn)和DNA純化以及下游檢測(cè)等多個(gè)步驟。交聯(lián)是CHIP實(shí)驗(yàn)的關(guān)鍵起始步驟,通常使用甲醛處理細(xì)胞或組織樣本,甲醛在蛋白質(zhì)與DNA之間以及蛋白質(zhì)與蛋白質(zhì)之間形成可逆的共價(jià)交聯(lián),將瞬時(shí)或弱相互作用的復(fù)合物在空間上鎖定。交聯(lián)時(shí)間需要經(jīng)驗(yàn)性優(yōu)化,交聯(lián)時(shí)間不足會(huì)導(dǎo)致結(jié)合復(fù)合物捕獲不完整,過長的交聯(lián)時(shí)間則可能引起抗原表位被過度掩蔽,降低免疫沉淀效率。交聯(lián)后的細(xì)胞經(jīng)裂解和超聲或微球菌核酸酶消化,將染色質(zhì)切割為200-500bp的片段,滿足抗體識(shí)別和后續(xù)PCR擴(kuò)增的要求。 CHIP的免疫沉淀環(huán)節(jié)對(duì)抗體的選擇有較高要求。用于CHIP的抗體需能夠識(shí)別天然構(gòu)象下的目標(biāo)蛋白表位,且應(yīng)優(yōu)先選擇經(jīng)CHIP驗(yàn)證的商業(yè)化抗體或經(jīng)過預(yù)實(shí)驗(yàn)確認(rèn)效價(jià)的抗體。抗體與protein A/G磁珠或瓊脂糖凝膠結(jié)合形成抗體-磁珠復(fù)合物后,與片段化的染色質(zhì)樣品共同孵育,目標(biāo)蛋白及與之結(jié)合的DNA片段被特異性地捕獲。洗滌步驟對(duì)降低背景信號(hào)至關(guān)重要,需在含不同濃度鹽和去垢劑的緩沖液中逐級(jí)洗滌,去除非特異性結(jié)合的染色質(zhì)片段。陰性對(duì)照通常使用同型對(duì)照IgG或非特異性抗體,用于評(píng)估背景結(jié)合水平。
CHIP實(shí)驗(yàn)的下游檢測(cè)方法根據(jù)研究目的的不同有所區(qū)別。ChIP-qPCR對(duì)已知目標(biāo)基因位點(diǎn)進(jìn)行精確定量,通過比較目標(biāo)位點(diǎn)抗體沉淀DNA與Input DNA的富集倍數(shù),評(píng)估轉(zhuǎn)錄因子在特定啟動(dòng)子或增強(qiáng)子區(qū)域的結(jié)合強(qiáng)度。ChIP-chip結(jié)合高通量芯片陣列可對(duì)全基因組已知區(qū)域進(jìn)行掃描。ChIP-seq則利用高通量測(cè)序在全基因組范圍內(nèi)無偏倚地鑒定所有結(jié)合峰,是目前最為全面的分析方案。ChIP-seq實(shí)驗(yàn)的數(shù)據(jù)分析流程包括讀段比對(duì)、峰識(shí)別、注釋和差異結(jié)合分析,對(duì)生物信息學(xué)技能有一定要求。
CHIP實(shí)驗(yàn)的成功率受到多種因素的制約。交聯(lián)和超聲條件的優(yōu)化往往需要經(jīng)過多次試驗(yàn)才能穩(wěn)定,建議在正式實(shí)驗(yàn)前進(jìn)行小范圍的預(yù)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證抗體的富集效率和qPCR引物的特異性。裂解液中蛋白酶抑制劑的充分添加可降低內(nèi)源性蛋白酶的活性。磁珠或凝膠在操作中應(yīng)避免劇烈吹打造成機(jī)械剪切。甲醛交聯(lián)逆轉(zhuǎn)后的DNA純化需充分去除殘留蛋白和RNA,否則會(huì)干擾下游的PCR擴(kuò)增效率。